No.5
- 回答日時:
あまりこういう書き込みは好ましくないのですか、しょうがないです・・・。
血球計算板は、最初にカバーガラスを被せ、カバーガラスの両サイドに
「ニュートンリング」ができるようにします。
そうすることで、中に入れる溶液の厚みが、顕微鏡で細胞数を数えるために
適正なものになるからです。
最近は、カバーガラスを上からクリップで止めるタイプや
カバーガラス的なものが既にかぶさった使い捨ての計算板もあるくらいです。
http://www.arb-ls.com/products/c_chip/
参考までに
http://rinsh.blog118.fc2.com/blog-entry-6.html
計算板に流し込む溶液は、通常何かしらの溶液で希釈することがほとんどなので、
中に入れるのが困難なほど粘性が高いことのほうが、聞いたことがありません。
勢いよく入れるというのは、ためらい無くいれた方が
均等になりやすいという、経験的なものです。
No.4
- 回答日時:
補足です。
粘度が高い等の理由で血球計算盤の隙間に細胞液が流れにくい場合、
細胞液を入れてからカバーガラスを乗せます。
勢い良く入れるのは聞いたことがありません。
サイドからキムワイプ等で液を吸うのと同様、細胞数を誤認する可能性があります。
No.3ベストアンサー
- 回答日時:
トリプシンが効いているかいないかは、
顕微鏡でカウントするときに、細胞がくっついているかどうかでわかるので
細胞がバラバラになっているにもかかわらず、均等でないとおいことで回答します。
1,血球板がガラス製ならば、一度よく洗ってみる。
たまに汚いと、液自体がうまく広がらない時があります。
2,細胞液を流し込む時、思い切って流し込む
勢いよくし過ぎると問題ですが、躊躇するのもよくないです。
3,そもそも細胞の大きさが大きめ。
他の細胞でも同じようなのでしょうか?一度比較してみては?
参考までに。
No.2
- 回答日時:
キチンとトリプシン処理ができていればピペッティングでバラけるはずです。
恐らくトリプシンの効きが悪いのではないでしょうか?
良くあるケースとしては次のようなことが考えられます。
操作と試薬を見直してみて下さい。
・培地除去が不十分
・トリプシン処理の前のリンスにPBS(-)ではなく、間違えてMg/Ca++が入っているものを使っている
・トリプシンの活性が落ちている
参考になれば幸いです^-^
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